T细胞衍生的细胞因子使EGFR阴性细胞对旁观者杀伤敏感
为了探讨旁观者杀伤的机制,评估了激活的T细胞释放的因素的影响。当与T细胞和EGFR BiTE1共孵育时,T细胞被激活并分泌多种促炎因子(图2和3,表S1,[18])。含有培养基和T细胞的粗提上清液,而不是从这些培养物中去除的无细胞培养基,在转移到EGFR阴性细胞时诱导显著的细胞毒性(图5A;图S4A和S4B)。如预期的那样,当EGFR阴性细胞直接用T细胞加EGFR BiTE1处理时,未观察到细胞毒性(图5A;图S4C)。这些结果在Transwell1实验中得到了证实,其中EGFR阳性细胞、T细胞和EGFR BiTE1被放置在上室,而EGFR阴性细胞被放置在下室;室间由限制细胞但不限制可溶性因子通过的膜分隔。T细胞可以通过5 μm的膜,但不能通过1 μm的膜,并且在BiTE1激活后具有更高的迁移能力(图S4D)。只有当膜孔径足够大,允许T细胞通过时,下室中的EGFR阴性细胞才会被杀死(图5B)。因此,靠近TAA阴性细胞的BiTE1激活的T细胞,而不是可溶性因子,介导了旁观者杀伤。
IFNγ和TNFα由BiTE1激活的T细胞高水平产生(图2,[28-30]),但含T细胞产生的细胞因子的澄清上清液对SW620细胞没有直接的细胞毒性。同样,外源添加的重组IFNγ和TNFα,单独或联合使用,即使在浓度超过BiTE1激活的T细胞产生的浓度时,对本研究中使用的细胞系也没有细胞毒性(图S4E)。然而,在存在EGFR阳性细胞的情况下,由EGFR BiTE1激活的T细胞(即BiTE1激活的T细胞)裂解了EGFR阴性细胞。当EGFR阴性细胞预先用IFNγ和TNFα处理时,裂解程度显著增加(图5C)。这些数据表明,这些细胞因子虽然本身没有直接的细胞毒性,但作用于EGFR阴性细胞,增加了它们对BiTE1激活的T细胞裂解的敏感性。