EGFR BiTE1介导的细胞毒性定量评估与机制解析

2025-06-08 MedSci xAi 发表于广东省
本文深入解析EGFR BiTE1介导的细胞毒性机制,基于2025最新实验数据,详细探讨旁观者杀伤效应、荧光素酶标记技术及T细胞共孵育的实验方法,提供定量评估与数据分析的完整流程。
图 S2. 定量评估旁观者杀伤效应时,EGFR 阴性和阳性细胞群体的计数。(A) 未经处理的 EGFR 阳性/阴性混合培养物在 48 小时时使用 EGFR 抗体染色的代表性图像,显示了接种时的 EGFR 阳性比例(蓝色 = 核染色;绿色 = EGFR,比例尺 = 30 μm)。(B) 用于分析图 3 的人群分布和荧光门控策略。虚线表示 EGFR 荧光的阈值。(C) EGFR 阳性的 NUGC4 细胞和 EGFR 阴性的 SW620 细胞以不同比例混合,并与 T 细胞(E:T 比例 10:1)及 0、1.2 或 11 pM EGFR BiTE1 共孵育 48 小时,如图 3 所述进行分析(左图:EGFR 阳性;右图:EGFR 阴性,N = 4,均值 ± 标准差)。(D) 荧光素酶标记的 EGFR 阴性 AML 细胞(MOLM13-LUC)与未标记的 EGFR 阳性 NUGC4 细胞(1:1)混合,并在与 T 细胞(E:T 10:1)及 EGFR BiTE1、阴性对照 MEC14 BiTE1 或阳性对照 CD33 BiTE1 共孵育 48 小时后通过发光法(Steady-Glo1, Promega)测量细胞毒性(N = 3,均值 ± 标准差)。(TIF) 图 S3. HCT116 细胞表达 EGFR 并对 EGFR BiTE1 介导的细胞毒性敏感。(A) HCT116 细胞与 EGFR BiTE1 和 T 细胞(E:T 10:1)共孵育 48 小时,通过细胞成像核计数测量细胞毒性(N = 4,均值 ± 标准差)。(B) 使用抗 EGFR 抗体(ThermoFisher)对活 HCT116 细胞进行染色,以确认 EGFR 表面表达。(TIF)
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